Q:为什么柱子反压过高?
A:可能是填料被堵塞;裂解液中含有微小的固体颗粒,建议上样前最好用 0.22µm 或0.45µm 滤膜过滤,或离心去除。
Q:为什么洗脱组分中无目的蛋白?
A:先跑胶确定蛋白是未结合还是未洗脱,通过对比纯化样品、流穿液、洗脱液的目的蛋白条带确定。
如果是未结合:1、可能是样品或缓冲液中存在一些干扰因素如非离子去污剂;建议样品透析或用结合buffer 稀释。2、可能是标签聚集,可以加入1mM的DTT改善此情况。
Q:为什么洗脱样品较杂?
A:1、可以先尝试下在洗杂步骤提高盐浓度或者洗杂buffer中加入终浓度0.1%非离子型去污剂。
2、可能是目的蛋白降解;可以WB验证,建议加一些蛋白酶抑制剂,如 PMSF等。
Q:该产品使用之前能剧烈摇晃吗?
A:不能剧烈摇晃,会破坏高度交联的 6%琼脂糖微球;使用前可轻轻充分颠倒若干次, 使琼脂糖珠混合均匀。
Q:重复使用次数是多少?
A:具体使用次数与样品有关,可以耐受0.1 M氢氧化钠清洗5次后载量仍有80%以上。
Q:孵育法的操作步骤?
A:1)根据纯化的样品量,取适量填料加入离心管中,1000 rpm 离心 1 min,吸弃上清;
2)向离心管中加入5 倍介质体积的平衡液清洗介质,1000 rpm 离心1 min,吸弃上清,重复两次以上。
3)加入样品,封闭离心管,4℃振荡孵育 2-4 h 或者37度孵育30 min-2h。
4)孵育结束后,1000 rpm 离心1 min,吸弃上清,上清保留作为流穿,用于电泳鉴定。
5)用5倍介质体积的洗杂液清洗介质,1000 rpm 离心1 min ,去除上清(注意不要吸到介质),重复 3-5次,中间建议更换新离心管。
6)加入3-5 倍柱体积的洗脱液进行洗脱,温育 5 min,1000 rpm 离心1 min可重复 2-3次。
Q:第一次使用效果是挺不错的,但第二次就不好了
洗脱结束后可以用较高浓度(20-50mM)的麦芽糖进行一次较为彻底的洗脱,然后用中性缓冲液冲洗,清洗后保存在20%乙醇 1XPBS中,保存温度2-8℃。如果使用氢氧化钠清洗的话,后续是需要用中性缓冲液例如PBS冲洗至ph中性,只使用纯水冲洗的话无法达到中和ph的效果,可能会有微量氢氧化钠残留在填料上影响后续纯化。
Q:样品表达量变低,有什么建议?
可以尝试降低上样流速,延长结合时间来提高目的蛋白和填料的结合效果。