Q：10606和19201的区别是什么？

A：19201是浓缩形式，需要的试剂用量更少一点，提取的准确性和提取反应的速度更快一些。一般10606就可以满足常规提取需求，如果客户想好更好的提取效果和rnase抑制效果可以用19201。

Q:RNA 降解？

A:(1) 组织样本保存不当。RNA 提取时要选新鲜组织或细胞样本，若为冻存样本，尽量避免反复冻融。样品离开活体或原来的生长环境后，样品中的内源RNase 开始降解 RNA，降解速度与内源 RNase 的含量及温度有关；(2) 投入样本较多，导致裂解不充分。试剂不能有效抑制样品中所有的 RNase；(3) RNA 保存时间过久，发生降解。对提取的RNA 进行纯度和完整度检测，分管在-80℃长期保存或在-20℃短期保存，尽快使用，避免反复冻融。

Q:是否有提 RNA 的层析柱?

A:没有。

Q:提取的 RNA 有基因组 DNA 污染？

A:(1) 向裂解液中加入氯仿后，需要在低温下（2-8℃）高速离心。离心后，RNA 被抽提到上层的水相中，中、下层是有机相，含有氯仿，DNA 即存在于中层。氯仿在常温下会与水以一定比例互溶，因此，常温离心会导致上层水相中也有少量基因组DNA 的污染。吸取上层液体时， 应非常小心，避免吸到中间层和下层；(2) RNA 样品中的少量基因组 DNA 残留，也可以通过后续逆转录反应前的基因组去除步骤进行去除。

Q:加入异丙醇离心后无沉淀？

A:RNA 含量可能较低。建议加入异丙醇后在 4℃或-20℃放置 10-30 min 后再离心。若依然看不见沉淀，在后面弃上清的操作时，采用吸取而不是倾倒的方法，以免沉淀丢失。