Q：全能核酸酶储存条件是什么？

A：保存于-20℃。储存 Buffer：20mM Tris-HCl pH8.0，50 mM NaCl，2mM MgCl2， 50% glycerin。

Q：反应pH 应在什么范围？

A：建议反应体系pH 值为 6~8

Q：反应中需不需要加Mg2+？

A：反应中Mg2+的终浓度为 5~10mM。

Q：样本黏度高，不易过柱，怎么办？

A：细胞破碎后由于含有大量 DNA 和 RNA，黏度很高，过柱不容易。解决的方法有两种：（1）用核酸酶。（2）也可以用高压匀浆。都可以达到降低黏度的作用。差别在于：用核酸酶，DNA 和RNA 可以绛解成小片段或单核苷酸；高压匀浆用机械剪切力将 DNA和 RNA 处理成较大的片断。超声波处理在处理小量表达的时候问题不大，但做大量蛋白表达的时候有困难。核酸酶的另外一个重要应用是：若你的目的蛋白是 DNA 结合蛋白，那么纯化的时候最好先用核酸酶处理。

Q：这个对于细胞培养基该怎么使用呢？Ph改变后会影响酶条件反应条件吧？（你们最优的条件是啥？影响因素多吗？）

A：细胞培养使用步骤可以参考说明书，有详细说明，全能核酸酶影响酶效的因素有很多，一下数据可以参考。

Q：为啥你们的酶活是一个区间？默克是一个大于250u/μl？

A：我我们对于酶活进行了区间测定，为了更准确的使客户有精确使用量，默克的是一个大于250u。

Q：你们的纯度确定和默克的区别？HPLC有什么优势吗？

A：我们的纯度测定是采用高相液相的方式（HPLC），默克的采用是SDS测定，纯度都大于99%。行业一般认为HPLC的方式会比SDS的方式更为准确些。