Q:这两个试剂用什么通道检测？仪器是贝克曼的。

A: Annexin V-PE 的激发波长Ex=488nm；发射波长Em=578 nm，发出橙红色荧光，建议使用 FL2 通道检测；7-AAD 的激发波长 Ex=546 nm；发射波长 Em=647 nm，发出红色荧光， 建议使用 FL3 通道检测。

Q: Annexin V-PE 染色失败或者阳性率偏低。

A:首先要确定实验中使用的诱导剂是否能产生凋亡。可通过设定确切凋亡诱导效果的阳性药物对照来排除这一情况。Annexin V-PE 染色失败，最常见的实验操作原因是贴壁细胞消化不当。Annexin V 跟 PS 的结合需要 Ca2+，Binding Buffer 中含有 2.5 mM 的 Ca2+，含 EDTA 的胰酶消化会影响染色，建议使用无EDTA 的胰酶。若使用含EDTA 的胰酶，必须通过洗涤步骤彻底去除EDTA。用 PBS 洗涤细胞沉淀后，应尽量去除残余液体。残留PBS 中的磷酸根，会形成磷酸钙沉淀。Binding Buffer 的瓶盖要紧闭，防止空气中的 CO2 进入后形成碳酸钙沉淀，减少游离Ca2+，导致实验失败。接触其他缓冲液如吸取PBS 后不更换枪头也会导致游离的 Ca2+减少。一些细胞其细胞膜上 PS 的密度较低，染色效果很差，此时建议更换细胞株或者采用 TUNEL 试剂盒检测凋亡。如果是贴壁细胞，药物诱导后漂浮的细胞也要收集，这部分细胞往往是凋亡阳性的细胞，丢弃会造成阳性结果偏低。

Q: 假阳性

A: 实验中发现未经诱导凋亡的对照细胞经染色后Annexin V-PE/7-AAD 双阳性比例过高，造成这种结果的原因可能是细胞本身活力低。建议用台盼蓝染色计算细胞活力，阴性对照台盼蓝拒染的细胞应大于 95%。若细胞活力低，建议重新复苏细胞，通常刚复苏的细胞至少应传代 2- 3 次以后才能进行实验。另一可能是细胞操作不当引起，操作过程中吹打细胞过于剧烈，贴壁细胞消化过程中消化时间过长，均可能导致细胞膜破坏，出现假阳性。此外，一般情况下诱导几个小时就可以出现早期凋亡，因此通常不需要处理大于 48 h 以上；诱导时间过长会使营养物质耗尽，导致细胞状态差，假阳性结果偏高。