细胞生物学实验中常使用Fluo-4, AM作为一种荧光探针来检测细胞内钙离子浓度变化。其检测原理基于Fluo-4, AM可穿透细胞膜进入细胞，之后被细胞内的酯酶剪切形成Fluo-4，从而被滞留在细胞内。Fluo-4游离配体几乎是非荧光性的，其荧光不会随钙离子浓度升高而增强。但是，当它与细胞内钙离子结合后可以产生较强的荧光，荧光会增加60至80倍。

Fluo-4, AM是钙指示剂Fluo-4, AM的升级版本，主要变化为后者分子上的两个氯原子被Fluo-4, AM上的氟所取代，该结构上的微小变化使Fluo-4, AM加载更快，在相同浓度下检测信号更强。

Q：有哪些比较常见的可见光激发Ca2+荧光探针？

A：Fluo-3 是最常用的可见光激发 Ca2+荧光探针、Fluo-4 是钙指示剂Fluo-3 的升级版本、Rhod-2 是另一种可见光激发的高亲和力Ca2+指示剂。

Q：几种探针的应用的位置？

A：如果是测定胞质内的钙离子建议选择 Fluo-3、4，如果是测定细胞器内较浓钙离子的实验建议采用Rhod-2

Q：通过流式细胞仪可以使用什么指示剂染料来测量钙通量？

A：Indo-1 是流式细胞术的首选染色剂，使用单一激光器进行激发（通常是氩离子激光器的 351-364 nm 谱线）并监测两种发射，Indo-1 的发射最大值从无 Ca2 +培养基中〜475nm  转变为当染料被 Ca2+结合饱和时的〜400nm。Indo-1 比较适用于多色荧光应用。

Q：荧光探针用什么缓冲液稀释？

A：工作液用最好是使用无血清培养基、HBSS 或是 PBS 等缓冲液进行稀释，稀释后的探针工作液即

可直接加入细胞进行检测。

Q：荧光探针装载完多久后观察？

A：为减少各种可能的误差，尽量缩短探针装载后到仪器测定所用的时间(刺激时间除外)。

Q：Fura-2 为什么需要两次不同的激发和发射测定？

A：结合 Ca2+后的最大激发波长从结合前的 380nm 向 340nm（Ca2+饱和时）偏移，其发射荧光强度与结合 Ca2+的浓度存 在定量关系。一般用 340nm 和 380nm 波长激发 Fura-2，在 510nm 处检测发射波长。通过使用与两种激发对应的荧光强度比 率来计算细胞内的钙离子浓度，这种比率测量方法可以消除不同细胞样品间荧光探针装载效率的差异，荧光探针的渗漏，细 胞厚度差异等一些误差因素。

Q：我需要用 Fluo-4 标记细胞进行钙通量分析。标记后多久可以保留染料？

A：将染料加入细胞后，细胞内酯酶从染料中除去'AM'部分。当'AM'基团被移除时，染料能够结合钙和发出荧光。由于染 料不与任何细胞成分共价结合，因此可能会主动从细胞中流出。流出速度取决于细胞的固有特性，培养条件和其他因素。染料可能会保留数小时，数天甚至数周，或在几分钟内丢失。建议染色后应立即进行检测，也可以使用丙磺舒限制主动外流 造成的损失。

Q：加载 Fluo-4 染料检测钙后可以固定细胞吗？

A：不能。因为 Fluo-4 不与任何细胞成分共价结合并且固定会损害膜，染料将不会被细胞保留。

Q：对于人肝星状细胞LX-2建议的Fluo-4工作浓度和孵育时间有吗？

A：参考文献PMID:27473374，可使用0.5uM Fluo-4，AM于37℃孵育15min。